جلد 26، شماره 9 - ( 9-1398 )                   جلد 26 شماره 9 صفحات 46-39 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ساوه، ساوه، ایران ، dr_kumarss_amini@yahoo.com
چکیده:   (3295 مشاهده)
زمینه و هدف: انتروکوکوس فکالیس مقاوم به آنتی‌بیوتیک، به عنوان دومین علت مهم عفونت‌های بیمارستانی در سراسر جهان شناخته میشود. شواهد نشان می‌دهد که بیانesp  عامل مؤثر در اتصال اولیه به سطوح و تشکیل بیوفیلم در باکتری انتروکوکوس فکالیس می‌باشد. هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر نانوذره کورکومین بر بیان ژن پروتئین سطحی esp مؤثر در تشکیل بیوفیلم در میان نمونه‌های انتروکوکوس فکالیس مقاوم به دارو دارای ژن مدنظر می‌باشد.
روش کار: در این مطالعه در مجموع 60 ایزوله انتروکوکوس فکالیس از محیط بستری بیماران از بیمارستان‌های شهر تهران جداسازی و بر اساس آزمون‌های میکروبیولوژی/بیوشیمیایی تعیین هویت گردید. ایزوله‌ها جهت تشخیص ژن esp توسط PCR  بررسی شدند و فعالیت مهاری نانوکورکومین بر روی تشکیل بیوفیلم و بیان ژن esp با استفاده از براث میکرودایلوشن و تکنیک Real-time PCR بررسی شد.
یافته‌ها: از 60 ایزوله مورد بررسی 12 باکتری انتروکوک فکالیس واجد ژن esp مورد بررسی قرار گرفت و نتایج MIC و سنجش بیان ژن نشان دادند که عصاره نانوکوکومین اثر ضدمیکروبی و مهاری بر روی تشکیل بیوفیلم و بیان ژن esp در ایزوله‌های باکتری انتروکوک فکالیس ندارد.
نتیجه‌گیری: نتایج نشان‌دهنده شیوع بالای ژن esp در میان ایزوله‌های E.faecalis و نیز قابلیت آن برای در نظر گرفتن به عنوان ابزاری برای شناسایی مولکولی باکتری در فرآیند تشکیل بیوفیلم می‌باشد. تغییرات سطح رونوشت در حداقل غلظت مهاری نانوذره کورکومین قابل‌ملاحظه نبود که نشان دهنده پتانسیل پایین این نانوذره در مهار اپران esp دارد.
متن کامل [PDF 1001 kb]   (1293 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: میکروبیولوژی

فهرست منابع
1. 1. Toledo-Arana A, Valle J, Solano C, Arrizubieta MaJ, Cucarella C, Lamata M, et al. The enterococcal surface protein, Esp, is involved in Enterococcus faecalis biofilm formation. Appl Environ Microbiol. 2001;67:4538-45.
2. 2. Benes J, Picha D, Kabelkova M, Dzupova O, Horova B,Gabrielova A. Infective endocarditis caused by unusual gram-positive pathogens. Folia Microbiol. 2002;47: 737.
3. 3. Zareba T, Hryniewicz W. Clinical significance of Enterococcus infection. New Med. 1997;4:30-3.
4. 4. Soares RO, Fedi AC, Reiter KC, Caierão J,d'Azevedo PA. Correlation between biofilm formation and gelE, esp, and agg genes in Enterococcus spp. clinical isolates. Virulence. 2014;5: 634-7.
6. 5. Heikens E, Bonten MJ, Willems RJ. Enterococcal surface protein Esp is important for biofilm formation of Enterococcus faecium E1162. J Bacteriol. 2007;189:8233-40.
7. 6. Shepard BD , Gilmore MS. Antibiotic-resistant enterococci: the mechanisms and dynamics of drug introduction and resistance. Microbes Infect. 2002;4: 215-24.
8. 7. Salehi M, Mosavari N, Hosseini F,Mobaraki M. The evaluation of esp and eep genes in Enterococcus strains isolated from clinical urine samples in Tehran. Arak Med Uni J. 2012;15:39-48.
9. 8. Vergis EN, Shankar N, Chow JW, Hayden MK, Snydman DR, Zervos MJ, et al. Association between the presence of enterococcal virulence factors gelatinase, hemolysin, and enterococcal surface protein and mortality among patients with bacteremia due to Enterococcus faecalis. Clin Infect Dis. 2002;35:570-5.
10. 9. Ramadhan A, Hegedus E. Biofilm formation and esp gene carriage in enterococci. J Clin Pathol. 2005;58:685-6.
11. 10. Sava I, Heikens E, Kropec A, Theilacker C, Willems R,Huebner J. Enterococcal surface protein contributes to persistence in the host but is not a target of opsonic and protective antibodies in Enterococcus faecium infection. J Med Microbiol. 2010;59:1001-4.
12. 11. Billström H, Lund B, Sullivan Å, Nord CE. Virulence and antimicrobial resistance in clinical Enterococcus faecium. Int J Antimicrob Agents. 2008;32:374-7.
13. 12. Sharifi Y, Hasani A, Ghotaslou R, Naghili B, Aghazadeh M, Milani M, et al. Virulence and antimicrobial resistance in enterococci isolated from urinary tract infections. Adv Pharm Bull. 2013;3:197.
14. 13. Wilken R, Veena MS, Wang MB,Srivatsan ES. Curcumin: A review of anti-cancer properties and therapeutic activity in head and neck squamous cell carcinoma. Mol Cancer. 2011;10:12.
15. 14. Kocaadam B, Şanlier N. Curcumin, an active component of turmeric (Curcuma longa), and its effects on health. Crit Rev Food Sci Nutr. 2017;57:2889-95.
16. 15. Negi N, Prakash P, Gupta ML,Mohapatra TM. Possible role of curcumin as an efflux pump inhibitor in multi drug resistant clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa. J Clin Diagn Res. 2014;8:DC04.
17. 16. Ike Y. Pathogenicity of enterococci. Nihon Saikingaku Zasshi Jap J Bact. 2017;72:189-211.
18. 17. Mohamed JA, Huang DB. Biofilm formation by enterococci. J Med Microbiol. 2007;56:1581-8.
19. 18. Phan TT, See P, Lee ST,Chan SY. Protective effects of curcumin against oxidative damage on skin cells in vitro: its implication for wound healing. J Trauma Acute Care Surg. 2001;51:927-31.
20. 19. Akram M, Shahab-Uddin AA, Usmanghani K, Hannan A, Mohiuddin E,Asif M. Curcuma longa and curcumin: a review article. Rom J Biol Plant Biol. 2010;55:65-70.
21. 20. Zorofchian Moghadamtousi S, Abdul Kadir H, Hassandarvish P, Tajik H, Abubakar S, Zandi K. A review on antibacterial, antiviral, and antifungal activity of curcumin. Biomed Res Int. 2014;2014.
22. 21. Kali A, Devaraj Bhuvaneshwar P, Charles M, Seetha KS. Antibacterial synergy of curcumin with antibiotics against biofilm producing clinical bacterial isolates. J Basic Clin Pharm. 2016;7:93.
23. 22. Jahromi MAM, Rajayi H, Al-Musawi S, Pirestani M, Ramandi MF, Ahmadi K, et al. Evaluation of Antibacterial Effect of Curcumin Loaded Chitosan Nanoparticles. Galen. 2015;5:134-41.
24. 23. Gutierrez JKT, Zanatta GC, Ortega ALM, Balastegui MIC, Sanitá PV, Pavarina AC, et al. Encapsulation of curcumin in polymeric nanoparticles for antimicrobial Photodynamic Therapy. PloS One. 2017;12:e0187418.

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.